Objetivos:
Proporcionar la formación teórica y práctica adecuada para conocer y saber utilizar las metodologías de separación, purificación e identificación de las sustancias presentes en una mezcla, tanto de origen sintético como natural, y para resolver problemas reales de separación, purificación e identificación de fármacos o compuestos relacionados eligiendo las herramientas y el instrumental más adecuado.

Prerrequisitos:
Conocer las bases estructurales de los grupos funcionales y esqueletos habituales de las moléculas orgánicas.
Conocer los aspectos de seguridad y los riesgos a tener en cuenta cuando se trabaja en un laboratorio de química.
Saber utilizar el material habitual presente en un laboratorio.

Contenidos:
1.- Métodos de obtención, aislamiento y purificación de fármacos: Destilación, cristalización y filtración. Extracción líquido-líquido y sólido-líquido. Cromatografía preparativa en capa fina y en columna. HPLC preparativo.
2.- Métodos de caracterización estructural e identificación de fármacos: Métodos químicos. Análisis elemental. Espectrometría de Masas. Infrarrojo. Ultravioleta. Resonancia Magnética Nuclear mono y bidimensional. Rotación óptica. Difracción de Rayos X. Otros métodos usados en la identificación de fármacos.

Evaluación y calificación:
- Asistencia y participación en clase 20 %
- Informe de seminarios y prácticas 15 %
- Trabajo Individual 25 %
- Examen 40 %

Método de enseñanza:
Sesiones académicas teóricas y prácticas, tutorías especializadas, seminarios en grupo, exposición y debate.

Objetivos:
Proporcionar al alumno la formación teórica y práctica necesaria para llevar a cabo las metodologías analíticas para la determinación de analitos en materias primas o principios activos. Adquirirá los conocimientos y se formará en las habilidades necesarias para diseñar, llevar a cabo la experimentación y deducir conclusiones con rigor científico y espíritu crítico.

Metodo de enseñanza:
Sesiones académicas teóricas y prácticas en el laboratorio, tutorías especializadas. En algún caso exposiciones y debates.

Contenidos:
1.-Métodos espectroscópicos: Espectroscopia de absorción molecular. Espectroscopia de fluorescencia. Espectroscopia de reflectancia en el infrarrojo cercano.
2.-Métodos de separación y medida: Cromatografía de Gases. Cromatografía de Líquidos. Electroforesis Capilar.
3.-Otros Métodos. Métodos Térmicos. Determinación de humedad.
4.-Tratamiento de la muestra: Extracción y microextracción en fase sólida, extracción mediante líquidos presurizados. Problemática y tratamientos utilizados en muestras biológicas

Evaluación y calificación:
- Asistencia y participación en clase 20 %
- Informe de seminarios y prácticas 15 %
- Trabajo Individual 25 %
- Examen 40 %

Objetivos:
Proporcionar al alumno la formación teórica y práctica necesaria para llevar a cabo el análisis y control de calidad tanto de los medicamentos como de las materias primas de acuerdo a la normativa existente para la Industria Farmacéutica.

Contenidos:
TEORÍA:
- Gestión de la Calidad. Control de la calidad y garantía de calidad
- Organización y personal. Organigrama y descripción de funciones. Normas de higiene.
- Instalaciones y equipos. Requerimientos.
- Documentación. Tipos. Normas y archivos.
- Seguridad en el laboratorio. Normas para instalación y personal.
- Gestión de residuos. Tipos de residuos y normativa.

PRÁCTICAS Y SEMINARIOS:
- Práctica de gestión de la calidad. Autoinspección.
- Evaluación crítica de normas de higiene del personal.
- Calibración y cualificación de equipos de medida.
- Elaboración de procedimientos normalizados de trabajo (PNT).
- Planificación de las normas de seguridad de un laboratorio de control de calidad.
- Diseño de gestión de residuos de algunos productos.

Actividades formativas (horas de dedicación del alumno):
- Clases Teóricas: 14
- Clases Prácticas: 18
- Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): Colectivas: 8, Individuales: 2
- Realización de Actividades Académicas Dirigidas: Con presencia del Profesor: 2, Sin presencia del Profesor: 9
- Otro Trabajo Personal Autónomo: Horas de Estudio: 24. Preparación de Trabajo Personal: 6
- Realización de Exámenes: Examen escrito: 2, Exámenes orales (control del Trabajo Personal): 2

Evaluación y calificación:
- Asistencia y participación en clase 15 %
- Informe de seminarios y prácticas 15 %
- Trabajo Individual 20 %
- Examen 50 %

Objetivos:
Proporcionar al alumno la formación teórica y práctica necesaria para el tratamiento y comprensión de los resultados analíticos obtenidos y estimar la fiabilidad de los mismos.
Se les suministrarán los conocimientos adecuados para controlar muestreo, estandarización y calibración, así como validación de metodologías analíticas y normas de acreditación de laboratorios analíticos.

Metodo de enseñanza:
Sesiones académicas teóricas y prácticas en el aula de informática, tutorías especializadas.
Resolución de problemas previamente propuestos.

Contenidos:
Evaluación de los resultados: precisión y exactitud. Calibración. Validación de la metodología analítica.
Problemática y criterios estadísticos de la toma de muestra. Tipos de tomas de muestra.
Acreditación del laboratorio analítico (normas ISO).

Evaluación:
Asistencia y participación en clase (evaluación continua): 15 %
Informe de prácticas: 15 %
Examen: 50 %
Trabajo individual: 20 %

Requisitos previos:
Conocimientos básicos de estadística.

Objetivos:
Conocer la importancia del control de la presencia de microorganismos en los procesos industriales de la producción de medicamentos y los métodos microbiológicos más actuales de uso en dicho control.

Contenidos:
- Control microbiológico durante la producción industrial. Métodos microbiológicos rápidos. Perspectiva histórica. Necesidad de métodos rápidos.
- Técnicas no convencionales de recuento de viables y organismos indicadores: Técnicas eléctricas basadas en la impedancia y conductancia. Técnicas colorimétricas. Técnicas de bioluminiscencia. Ensayos de ATP. Citometría de flujo.
- Esterilización. Control de esterilidad.
- Métodos automatizados y miniaturizados de identificación de microorganismos. Métodos moleculares e inmunológicos.
- Biosensores. Características, aspectos tecnológicos y aplicaciones.

Recomendaciones:
Haber estudiado Microbiología General y Microbiología Industrial.
Saber inglés.

Bibliografía:
Principles and Practice of Disinfection, Preservation and Sterilization. Russell, A,D,; HugoW.B. and Ayliffe G.A.J. (Ed.). Blacwell Scientific Publications 2004 Hugo and Russell's Pharmaceutical Microbiology. Denyer S.P,; Hadges, N.A. y Gorman, S.P. (Editores). Blacwell Scientific Publications 2004 Raphid Microbiological Methods in the Pharmaceutical Industry. Easter M.C. (Ed.).. Interpharm CRC. 2003

Metodología docente:
Clases teóricas y prácticas, exposiciones y debates, tutorías especializadas (presenciales y virtuales) y otras actividades académicas dirigidas

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): Se tendrá en cuenta
- Informe de prácticas 15 %
- Trabajo Individual 15 %
- Examen 45 %
- Otros (Laboratorio Virtual) 15 %

Objetivos:
Actualizar y ampliar los conocimientos sobre los mecanismos de acción de los fármacos, reconocer los diferentes tipos de receptores y otras dianas moleculares de los fármacos, analizar los procesos de interacción del fármaco con tales dianas, y considerar estrategias de futuro (en función de las posibles dianas farmacológicas) para el diseño, la obtención y la experimentación de nuevos grupos farmacológicos.

Contenidos:
- Estudio de la interacción fármaco y proteínas receptoras y sus consecuencias farmacológicas. Curvas dosis-respuesta, cuantificación de parámetros de agonistas y antagonistas.

- Mecanismos de acción relacionados con sistemas de transporte (sistemas de transporte celular como dianas farmacológicas, canales iónicos o proteínas canales, dianas moleculares de fármacos, fármacos moduladores de bombas iónicas, transportadores iónicos y otros sistemas de transporte celular).

- Mecanismos de acción relacionados con sistemas enzimáticos Los sistemas enzimáticos como dianas farmacológicas, y aspectos cinéticos de la inhibición farmacológica enzimática.

- Mecanismos de acción de fármacos que interaccionan sobre receptores. Receptores de membrana, Receptores reguladores transcripcionales, Procesos de modulación de receptores.

Actividades de Aprendizaje:
Clases teóricas 12 h, Seminarios-Trabajos dirigidos 15 h, Prácticas 30 h, Trabajo del estudiante y otras actividades 43 h.

Sistema de evaluación:
Asistencia y participación en clase 30%, Examen 20 %, Informe de prácticas 50 %.

Prerrequisitos:
Conocimientos de Química Orgánica y Farmacéutica básicos a nivel de licenciatura (Químicas, Farmacia,…).

Contenidos:
1). Modelado molecular: Geometría molecular. Propiedades moleculares. Estereoquímica. Energías moleculares. Análisis conformacional. Ejemplos seleccionados de análisis 3D.
2). Estructura y modelado de proteínas: Introducción a la estructura de las proteínas. Modelado de proteínas.
3). Estrategias en el diseño de fármacos: Objetivos en el diseño de fármacos: situaciones, posibilidades y estrategias. Relaciones estructura actividad. Diseño basado en fármacoforos. Diseño basado en la estructura. Diseño de bibliotecas dirigidas.
4). REA : Introducción y fundamentos. Fases. 3D-REAC. Ejemplos.
5). Diseño basado en fármacoforos: Análisis: imitación molecular, el papel de los compuestos activos e inactivos, generación de los farmacóforos, mapeo del receptor. Diseño: Modificación química, búsquedas en bases de datos, diseño de novo y diseño manual. Ejemplos.
6). Diseño basado en la estructura de la diana: Introducción. Análisis estructural de las dianas. Cuantificación de la energía de interacción. Diseño: Reglas y métodos. Ejemplos.
7). Quimioinformática: Introducción. Diseño de bibliotecas de compuestos. Peptidomiméticos. Predicción de ADME y propiedades

PROGRAMA DE PRÁCTICAS:
Familiarización con el entorno UNIX Manejo de programas de visualización molecular de pequeñas moléculas: análisis de las estructuras y de sus propiedades. Generación de estructuras tridimensionales de pequeñas moléculas. Cálculo de propiedades útiles para el establecimiento de relaciones estructura-actividad. Búsquedas en bases de datos de información estructural de macromoléculas Manejo de programas de visualización de macromoléculas. Determinación del sitio activo. Generación de estructuras de macromoléculas mediante homología. Generación y análisis de los complejos fármaco-diana.

Lecturas:
Lipkowitz, K., Boyd, D.B.: Reviews in Computational Chemistry, VCH Publishers, New York, 1990.
Hansch, C: Comprehensive Medicinal Chemistry. Ed. Pergamon Press. U.K. 1990.
Journal Medicinal Chemistry J. Gasteiger y T. Engel, Chemoinformatics. A textbook., VCH Publishers, Erlangen, 2003.
J. Gasteiger, Handbook of Chemoinformatics, VCH Publishers, Erlangen, 2003.

Método de enseñanza:
Clases presenciales:
Clases teóricas 24h
Clases prácticas 12h

Clases no presenciales: 28h
Trabajo del alumno 34h
Evaluación del alumno 2h

Total: 100 horas (4 créditos ECTS)

Objetivos:
Conocer las principales dianas utilizadas actualmente en la elaboración de vacunas antiparasitarias. Describir las herramientas para su obtención y valoración. Estudiar los sistemas de valoración de los nuevos productos vacunales.

Prerrequisitos:
Conocimientos básicos de Parasitología e Inmunología.

Contenidos:
Componentes principales de una vacuna antiparasitaria.
Mecanismos efectores frente a protozoos, helmintos y ectoparásitos.
Estrategias de evasión parasitaria.
Tipos de vacunas antiparasitarias atendiendo a su componente activo.
Estado actual de las vacunas frente a enfermedades parasitarias.
Dianas específicas sobre las que actúan las vacunas antiparasitarias.
Problemas que surgen para el desarrollo de vacunas antiparasitarias.
Vacunas antiparasitarias comerciales o en fases de ensayo avanzado.

Métodos de enseñanza:
Clases teóricas y prácticas. Tutorías individuales y colectivas. Seminarios con exposición y debate en grupo.

Evaluación y Calificación:
Seminarios, trabajos colectivos: 30%
Trabajo individual y participación en clase : 30%
Exámen: 40%

Objetivos:
El objetivo general de este curso es que los alumnos adquieran los conocimientos necesarios para trabajar en síntesis de fármacos. Partiendo de un conocimiento previo de los aspectos teóricos necesarios para comprender las reacciones químicas implicadas en la síntesis de fármacos, se pretende profundizar en su aplicación en la preparación de compuestos en las fases de investigación, desarrollo y producción.

Prerrequisitos:
Conocimientos de Química Orgánica a nivel de licenciatura: Químicas, Farmacia y Biología, Bioquímica o Biotecnología (con estudios específicos de Química Orgánica).
Conocimientos básicos de Inglés Técnico.
Conocimiento de las normas básicas de trabajo en el laboratorio.

Programa teórico:
A. Introducción (1 h)
B. Síntesis dirigida a la estructura (12 h)
C. Síntesis dirigida a la diversidad (5 h)
D. Práctica de la síntesis orgánica (7 h)
E. La síntesis orgánica en la industria farmacéutica (5 h)
Programa práctico:
F. Práctica del trabajo de laboratorio (20 h)

Lecturas
J. I. Borrell, J. Teixidó y J.L.Falcó "Síntesis orgánica". Síntesis. Madrid. 1999.
A. Delgado, C. Minguillón y J. Joglar "Introducción a la síntesis de fármacos". Síntesis. Madrid. 2002.
A. Kleemann, J. Engel, B. Kutscher, D. Reichert. "Pharmaceutical Substances. Syntheses. Patents. Application". Thieme. Nueva York, Versión impresa segunda edición 2001, versión electrónica 2.4, 2006.
K. Weissermel, H-J Arpe "Industrial Organic Chemistry", Wiley-VCH, 2003.
W. Cabri, R. di Fabio "From Bench to Market: The Evolution of Chemical Synthesis" Oxford University Press, 2000.

Método de Enseñanza:
Clases teóricas y prácticas, exposiciones y seminarios, tutorías especializadas (presenciales o virtuales) y otras actividades académicas dirigidas.

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase ( 20 %)
- Informe de prácticas ( 10 %)
- Trabajo Individual ( 30 %) incluyendo exposición de trabajos
- Examen ( 40 %)

Objetivos:
Adaptar procedimientos adecuados para el aislamiento y obtención de fármacos naturales.

Prerrequisitos:
Conocimientos de Química Orgánica a nivel de Licenciatura en Farmacia, Química, Biología, Bioquímica y Biotecnología.

Contenidos:
- Introducción a la biosíntesis de sustancias bioactivas.
- Fuentes de obtención de sustancias naturales.
- Bioprospección y obtención de productos naturales a partir de cultivos celulares vegetales.
- Obtención y manipulación de extractos.
- Selección de moléculas bioactivas como compuestos "cabeza de serie".
- Selección de moléculas inactivas como precursores de fármacos.
- Transformación de las moléculas naturales en fármacos.

Lecturas:
Durante el desarrollo del curso, se tendrá acceso a las fuentes bibliográficas disponibles en el Departamento de Química Farmacéutica y Fisiología Vegetal y a las bases de datos de la USAL.

Método de enseñanza:
Clases teóricas magistrales.
Seminarios.
Clases prácticas.
Tutorías.

Objetivos:
Dotar al alumno de competencias básicas para ser capaces de evaluar la producción de fármacos por microorganismos y que los alumnos sean capaces de tomar decisiones sobre las condiciones óptimas de producción de fármacos.

Contenidos:
- Introducción a la Biotecnología Farmacéutica.
- Células implicadas en la producción biotecnológica de fármacos. Bacterias. Levaduras. Vegetales. Animales. Sistemas experimentales.
- Producción Industrial de Antibióticos.
- Producción Industrial de Vacunas.
- Producción Industrial de Hormonas Esteroideas.
- Producción Industrial de Vitaminas.
- Producción Industrial de Proteínas Humanas Recombinantes.

Actividades formativas (horas de trabajo del alumno):
- Clases Teóricas: 12 horas.
- Clases Prácticas: 20 horas.
- Exposiciones y Seminarios: 10 horas.
- Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): Colectivas: 8 horas, Individuales: 2 horas.
- Realización de Actividades Académicas Dirigidas: Con presencia del Profesor: 4 horas, Sin presencia del Profesor: 8 horas.
- Otro Trabajo Personal Autónomo: Horas de Estudio: 24 horas, Preparación de Trabajo Personal: 8 horas.
- Realización de Exámenes: Examen escrito: 2 horas, Exámenes orales (control del Trabajo Personal): 2 horas

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase: 25%
- Informe de prácticas: 20%
- Trabajo Individual: 30%
- Examen: 25%

Objetivos:
Dar a conocer los principales principios activos de origen inorgánico, especialmente los agentes antitumorales derivados de compuestos de coordinación con Pt y otros elementos. También se incluirá la descripción de los principales agentes de naturaleza radioactiva utilizados en radiodiagnóstico.

Prerrequisitos:
Es aconsejable, aunque no absolutamente necesario, tener conocimientos de Química Inorgánica, fundamentalmente de la Química de la Coordinación.

Métodos de docencia:
La docencia se llevará a cabo mediante Clases magistrales, Prácticas de Laboratorio y Actividades complementarias (Seminarios, trabajos personales, páginas Internet, etc.).

Contenidos:
-Compuestos de Coordinación como agentes antitumorales. Estudio particular del cis-Platino. Otros derivados antitumorales de segunda y tercera generación.
-Agentes quelatantes en procesos de separación de metales pesados de los organismos vivos.
-Metales en Medicina: Au en artritis reumatoide, Li como maníaco-depresivo, etc. Compuestos de Tc en diagnósticos por imagen. Radionúclidos en Radioimagen. Terapia por captura neutrónica: compuestos de boro.
-En las clases prácticas se realizarán: Síntesis y caracterización de complejos con actividad nucleasa y Síntesis y caracterización de agentes quelatantes.

Contenidos:
La evaluación será contínua, valorando la participación del alumno en las distintas actividades y el trabajo personal, sobre todo en lo referente a las prácticas de laboratorio y otros trabajos bibliográficos.

Objetivos:
Tras cursar la asignatura el alumno deberá haber adquirido conocimientos generales sobre las técnicas de cultivos celulares: obtención y utilización de células animales, cultivos primarios, líneas celulares estables. También se pretende su formación en la utilidad/necesidad de los sistemas de cultivo celular para evaluar la actividad y/o toxicidad de fármacos o principios activos en desarrollo. Por otra parte, deberá haber adquirido habilidad práctica en el manejo de cultivos de células animales y haberse familiarizado con métodos para evaluación in vitro de viabilidad celular, toxicidad, apoptosis/necrosis, estrés celular, efecto antiproliferativo, etc, inducidos por fármacos.

Prerrequisitos:
Graduados en licenciaturas de Ciencias de la Salud y Ciencias Experimentales con conocimientos básicos de Biología general y Biología Celular en particular.

Contenido:
1. Conceptos generales e introducción al cultivo celular. Biología de las células en cultivo. Criterios de elección del método de evaluación de fármacos in vitro o ex vivo. Aplicaciones. Ventajas e inconvenientes.
2. Equipamiento, medios y sustratos. El laboratorio de cultivo celular. Instrumentación. El medio de cultivo. El sustrato del cultivo. Condiciones de cultivo. Contaminaciones y descontaminación.
3. Tipos de cultivos. Cultivos de células adherentes. Cultivos de células en suspensión. Cultivos primarios. Líneas celulares estables. Cultivos de tejidos. Modelos ex vivo.
4. Estrés y toxicidad inducida por fármacos. Protocolos de exposición de las células al fármaco. Técnicas para determinación de estrés oxidativo, apoptosis/necrosis y toxicidad en células en cultivo.

Bibliografía:
Freshney RI. Culture of Animal cells: A Manual of Basic Technique. 4th ed. New York: Willey-Liss, 2000.
Animal Cell Culture & Technology, Garland Science/BIOS Scientific Publishers. M. Butler (2004).
Cell and Tissue Culture for Medical Research, Wiley (2000).
Marx, Uwe / Sandig, Volker (eds.).
Drug Testing in vitro. Breakthroughs and Trends in Cell Culture Technology. 1. Edition - October 2006.
Tissue Engineering, Wiley-VCH. W.W. Minuth, R. Strehl, K. Schumacher (2005).

Método de enseñnza:
Clases teóricas y prácticas . Exposiciones y debates.

Evaluación:
- Asistencia y participación en clase (%):Obligatorias
- Informe de prácticas (%): 50
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%) 30

Objetivos:
Formación científica, técnica y metodológica para evaluar las características farmacocinéticas, que constituyen la información preclínica necesaria para abordar la I+D de nuevos medicamentos.

Prerrequisitos:
Conocimientos básicos en farmacocinética, fisiología, físico-química, matemáticas, estadística, informática e inglés.

Contenidos:
- Evaluación in sílico del ADME.
- Estudios en órgano aislado.
- Técnicas de microdiálisis.
- Anticipación y evaluación del riesgo de interacciones.
- Selección de tiempos de muestreo y métodos de simulación.
- Estudios de farmacocinética experimental "in vivo".

Bibliografía:
- Ross BD. Perfusion techniques in Biochemistry. Clarendon Press. Oxford.1972.
- Gabrielsson (Pepe).
- Shargel L, Yu ABC. Applied Biopharmaceutics and Pharmacokinetics. Quinta edición New York: McGraw-Hill; 2005.
- Han van de Waterbeemd, Hans Lennern's and Per Artursson (Eds).Drug bioavailability: estimation of solubility, permeability, absorption and bioavailability.1st ed., Wiley-VCH, 2003.
- Ritschel WA, Kearns GL. Handbook of Basic Pharmacokinetics.
- Including clinical applications. Sexta edición Washington, D.C.: APhA; 2004.
- Bonate PL. Pharmacokinetic-Pharmacodynamic modelling and simulation. Springer. USA. 2006.
- Santos Martinez y cols. In vitro of experimental factors affecting the microdialysis results. Analytica Chimica Acta 459 (2002): 143-150.

Método de enseñnza:
Clases teóricas y prácticas; exposición y debate y tutorías especializadas.

Evaluación:
- Asistencia y participación en clase (%): 30
- Informe de prácticas (%): 20
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%): 30

Objetivos:
Capacitar al alumno para entender y evaluar los informes de carácter toxicológico de los fármacos y para realizar actividades profesionales en el campo de la toxicología (ensayos de toxicidad, informes, peritajes).

Prerrequisitos:
Graduados en licenciaturas de Ciencias de la Salud y Ciencias Experimentales.

Contenidos:
1- Ensayos de la evaluación de la toxicidad in vivo.
2- Ensayos de la evaluación de la toxicidad in Vitro.
3-Evaluación del Riesgo de los Medicamentos para la Salud Humana.
4-Toxicogenómica y Proteómica. 5-Toxicología Reguladora.

Lecturas:
- Klaasen CD. Casarett & Doull's Toxicology: The Basic Science of Poisons, 6 ed., Mc Graw-Hill, New York (2001).
- Klaassen, C. D. Casarett and Doull´s. Fundamentos de Toxicología. Edición en español revisada por M. López-Rivadulla.McGraw-Hill/Interamericana de España. Madrid. (2005).
- Repetto G, Moreno I, del Peso A, Repetto M, Cameán AM La búsqueda de información toxicológica: módulo práctico de aprendizaje". Revista de Toxicología 18:92-98 (2001). BUSCATOX: http://www.farmacia.us.es/toxicologia.htm.
- Repetto M. Toxicología Avanzada. Díaz de Santos, Madrid (1995).
- Repetto M. Toxicología Fundamental. Tercera Edición, Díaz de Santos, Madrid (1997).

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): 30
- Informe de prácticas (%):20
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%): 30

Objetivos:
Proporcionar al alumno los conocimientos teóricos y prácticos para la valoración in vivo e in vitro de actividades y de mecanismos de acción a nivel cardiovascular, específicamente de fármacos que afectan a la presión arterial, al tono vascular o sobre el remodelado cardiovascular.

Contenidos:
Determinación de actividades sobre el Sistema Cardiovascular:
- Ensayos "in vivo": medida presión arterial y frecuencia cardiaca, técnicas de autoperfusión.
- Ensayos "in vitro": perfusión de lechos vasculares (riñón, mesenterio), vasos aislados, corazón perfundido y aurículas aisladas.
- Remodelado cardiovascular: Índices de hipertrofia, fibrosis

Actividades formativas:
Clases teóricas 10 h, Prácticas 20 h, Trabajo del estudiante y otras actividades 20 h.

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase: 30 %
- Informe de prácticas: 50 %
- Trabajo individual: 20 %

Objetivos:
Proporcionar al estudiante los conocimientos teóricos y prácticos para la valoración in vivo de actividades analgésica y antiinflamatoria y la determinación in vitro de mecanismos, sistemas enzimáticos y mediadores implicados en procesos inflamatorios

Contenidos:
Determinación y valoración de actividades Analgésica y Antiinflamatoria.
Ensayos "in vivo": Placa caliente, foco calorífico, edema plantar por carragenina, edema auricular por forbol.
Ensayos "in vitro": Determinación de actividades enzimáticas, marcadores de la inflamación, moléculas de adhesión, citocinas...

Actividades formativas:
Clases teóricas 10 h, Prácticas 20 h, Trabajo del estudiante y otras actividades 20 h.

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase: 30 %
- Informe de prácticas: 50 %
- Trabajo individual: 20 %

Objetivos:
Conocer las bases moleculares de las principales patologías del sistema nervioso no sólo para comprender el mecanismo de acción de las terapias empleadas en la actualidad sino para sentar las bases que permitan el diseño de nuevas estrategias terapéuticas

Prerrequisitos:
Graduados en licenciaturas de Ciencias de la Salud y Ciencias Experimentales con conocimientos básicos de Biología general y Biología Celular en particular.

Contenidos:
Clases teóricas (12 horas):
1. Bases moleculares de los procesos neurodegenerativos y neurorreparadores. Aplicaciones terapeúticas.
1.1. La isquemia como factor desencadenante de los procesos neurodegenerativos.
1.2. Mecanismos de neuroprotección.
1.3 Mecanismos de neurorreparación.

2. Neoplasias más frecuentes del sistema nervioso. Diseño de nuevas estrategias terapéuticas.

Clases prácticas (10 horas):
Seminarios dirigidos y trabajo no presencial (28 horas)

Métodos de enseñanza:
Clases teóricas y prácticas . Exposiciones y debates

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): Obligatorias
- Informe de prácticas (%): 50
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%) 30

Objetivos:
Conocer los métodos de estudio para la identificación de las variaciones hereditarias en genes que dictaminan la respuesta a fármacos y que exploran estas variaciones y los tests genéticos que permitan predecir la respuesta individual a un fármaco en particular.

Prerrequisitos:
Graduados en licenciaturas de Ciencias de la Salud y Ciencias Experimentales con conocimientos básicos de Biología general y Biología Celular en particular.

Contenidos:
Clases teóricas (12 horas):
1. Introducción a la Farmacogenómica.
2. Variabilidad genética y repercusiones farmacológicas: Polimorfismos y SNPs.
3. Bases teóricas de los métodos de secuenciación y análisis de resultados.
4. Bases teóricas de la PCR cuantitativa y análisis de resultados.
5. Bases teóricas de metodologías de screening de medio rendimiento para genotipado: Tarjetas semifluídicas, Resecuenciación, Multiplex.
6. Bases teóricas de metodologías de screening de alto rendimiento para genotipado: Microarrays, DASH (Dinamic allelic specific hybridization).
7. Mecanismos implicados en la resistencia a fármacos antitumorales: Proteínas de resistencia a múltiples fármacos.
8. Métodos de manipulación genética: knock-out, knock-in, RNAs de intererencia.

Clases prácticas (10 horas):
1. Procesamiento de muestras de biopsias o muestras sanguíneas. Diseño de primers para detección de SNPs.
2. QPCR.
3. Análisis y presentación de resultados de resultados (Excel, Powerpoint, etc) de QPCR, análisis de RLPFs.
4. Utilización de bases de datos para el análisis de los resultados de secuenciación.
5. Sistemas de expresión heteróloga de proteínas.
6. Técnicas de manipulación genética. Diseño y obtención de constructos. Tecnología Gateway.
7. Técnicas de transfección transitoria y estable.
8. RNA de interferencia.

Metodos de enseñanza:
Clases teóricas y prácticas . Exposiciones y debates

Evaluación y calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): Obligatorias
- Informe de prácticas (%): 50
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%) 30

Objetivos:
Esta asignatura pretende que el estudiante demuestre las competencias asociadas al título que ha adquirido durante sus estudios.
Tendrán derecho a la adjudicación de un Trabajo y a la asignación del correspondiente Tutor todos los estudiantes que estén matriculados de los créditos correspondientes al Trabajo Fin de Master.
La presentación del trabajo Fin de Master requerirá haber superado todas las asignaturas que conforman el plan de estudios.

Actividades formativas y metodologías:
Teniendo en cuenta el tipo de formación que pretende este master, académica e investigadora, el Trabajo de Fin de Master deberá ser realizado individualmente por cada alumno bajo la dirección de un tutor/es, que será un profesor doctor de los que participan en la docencia del master y consistirá en el desarrollo, ejecución y redacción de un trabajo original de introducción a la Investigación en cualquiera de las materias que se imparten en el master.
Dada la vertiente investigadora del master y que lleva asociado un Doctorado, los Trabajos de Fin de Master podrán ir asociados a las líneas de investigación ofetadas.
Durante su desarrollo, el estudiante podrá aplicar y desarrollar todas las competencias genéricas que ha ido adquiriendo a lo largo de todo el programa de master y finalizará con la presentación del trabajo escrito y la exposición y defensa pública ante la comisión correspondiente

Objetivos:
Indicar los fármacos de elección con actividad antiparasitaria, describiendo su mecanismo de acción. Describir efectos secundarios e interacciones farmacológicas de los antiparasitarios. Conocer las principales dianas utilizadas actualmente en la elaboración de fármacos antiparasitarios. Estudiar los sistemas de valoración de nuevos antiparasitarios.

Prerrequisitos:
Conocimientos básicos de Parasitología y Farmacología.

Contenidos:
Clasificación y tipos de fármacos antiparasitarios.
Mecanismos de acción frente a protozoos, helmintos y ectoparásitos.
Estado actual de los tratamientos frente a enfermedades parasitarias.
Dianas específicas sobre las que actúan los fármacos antiparasitarios.
Efectos secundarios generados por diferentes antiparasitarios.
Interacciones farmacológicas.

Evaluación y calificación:
Seminarios, trabajos colectivos: 30%
Trabajo individual y participación en clase : 30%
Exámen: 40%

Metodología Docente:
Clases teóricas y prácticas. Tutorías individuales y colectivas. Seminarios con exposición y debate en grupo.

Objetivos:
Capacitar para poder manipular y experimentar de forma correcta con las especies animales más comunes utilizadas en investigación

Contenidos:
- Legislación y ética animal.
- Biología básica y cuidado de las especies más relevantes de los animales de laboratorio.
- Verificación de las necesidades fisiológicas y del bienestar de los animales.
- Reconocimiento de la ausencia del bienestar animal y de otras alteraciones fisiológicas.
- Prácticas de anestesia, analgesia y principios básicos de cirugía.
- Seguridad y Salud ocupacional.

Actividades formativas:
- Clases teóricas 26 h
- Prácticas 12 h
- Seminarios 8 h
- Otras actividades 4 h

Evaluación:
- Asistencia y participación en clase: 30 %
- Evaluación práctica de manejo de animales, técnicas experimentales básicas y bienestar animal 30%
- Trabajo en grupo de elaboración de un supuesto práctico de proyecto experimental con animales 40%

Objetivos:
Adquirir los conocimientos teóricos y prácticos para: - Interpretar y diseñar estudios de farmacovigilancia de medicamentos de uso humano, así como conocer el marco normativo vigente y las obligaciones de todas las partes implicadas - Analizar los errores de medicación y planificar un programa de mejora de la seguridad del uso de los medicamentos, así como conocer el marco normativo e identificar y prevenir los riesgos asociados al etiquetado y envasado de los medicamentos.

Contenidos:
- Historia, desarrollo y técnicas de la Farmacovigilancia. Base Legal. Las Reacciones Adversas.
- Identificación de riesgos: Los sistemas de notificación espontánea de sospechas de reacciones adversas. La Tarjeta Amarilla, significado y cumplimentación. Causalidad en Farmacovigilancia. La Farmacovigilancia y los profesionales sanitarios.
- Cuantificación de riesgos: Bases epidemiológicas de la farmacovigilancia. Medidas de frecuencia y medidas de asociación. Estudios en farmacovigilancia.
- Gestión de riesgos: La relación beneficio/riesgo. La toma de decisiones. Procesado y difusión de la información; las bases de datos. Gestión de riesgos: Minimización de los riesgos (Medidas administrativas. Comunicación a profesionales sanitarios y a ciudadanos. Procedimientos de comunicación de la AEMPS).
- Farmacovigilancia desde el punto de vista de la industria farmacéutica. Entorno legislativo. Organización y recursos.
- Farmacovigilancia en la industria: Notificación expeditiva de sospechas de reacciones adversas. Notificación electrónica. Informes periódicos de seguridad. Planes de gestión de riesgos.
- La seguridad en la utilización de los medicamentos. Introducción. Terminología. Relación entre errores de medicación y acontecimientos adversos por medicamentos. Repercusión asistencial y económica de los errores de medicación. Fundamentos de las estrategias de mejora de la seguridad. Sistemas de notificación de errores de medicación.
- Métodos de detección de errores de medicación. Análisis y clasificación de los errores de medicación. Categorías de gravedad. Tipos de errores. Principales causas y factores contribuyentes de los errores de medicación.
- El etiquetado y envasado de los medicamentos como causa de errores de medicación.
- Prácticas de mejora de la seguridad en el uso de los medicamentos. Instituciones que trabajan en la seguridad del uso de los medicamentos.

Actividades formativas (horas de trabajo del estudiante):
- Clases Teóricas: 11 horas
- Clases Prácticas: 8 horas
- Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): 2 horas
- Realización de Actividades Académicas Dirigidas: 8,6 horas
- Otro Trabajo Personal Autónomo: Horas de Estudio: 18,4 horas
- Realización de Exámenes: 2 horas

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): 20
- Informe de prácticas (%): 30
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%): 30

Objetivos:
Conocer la legislación y metodología a utilizar en la realización de ensayos clínicos. Adquirir habilidades relacionadas con el diseño y control de un ensayo clínico.

Prerrequisitos:
Conocimientos de Química Orgánica a nivel de licenciatura: Químicas, Farmacia y Biología, Bioquímica o Biotecnología (con estudios específicos de Química Orgánica).
Conocimientos básicos de Inglés Técnico.
Conocimiento de las normas básicas de trabajo en el laboratorio.

Contenidos:
- Los ensayos clínicos en la investigación de nuevos medicamentos. Desde la investigación preclínica a la evaluación económica.
- Aspectos éticos y legales de los ensayos clínicos.
- El papel del farmacéutico en los ensayos clínicos.
- Los ensayos clínicos y la selección de medicamentos.
- Metodología de los ensayos clínicos.
- El papel de las CRO en los ensayos clínicos.
- El farmacéutico en el seguimiento de los ensayos clínicos

Actividades formativas (horas de trabajo del estudiante):
Clases teóricas: 11 h
Clases prácticas: 7 h
Exposiciones y seminarios: 2h
Realización de actividades académicas dirigidas: 14 h
Trabajo Personal Autónomo: 14 h
Examen escrito 1 h
Control del trabajo personal 1 h

Evaluación y Calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): 20
- Informe de prácticas (%): 30
- Trabajo Individual (%): 20
- Examen (%): 30

Objetivos:
- Desarrollar las habilidades necesarias en el alumno para utilizar los recursos básicos necesarios en la investigación.
- Facilitar la integración del alumno en los equipos de investigación profesionales.

Contenidos:
- Recursos bibliográficos básicos (Endnote, Medline, casos prácticos con publicaciones).
- Diseño de experimentos y análisis de datos (SPSS, STATVIEW).
- Elaboración de informes y presentaciones orales (Power Point)

Actividades formativas (horas de trabajo del alumno):
- Clases Teóricas: 10
- Clases Prácticas: 10
- Exposiciones y Seminarios: 4
- Tutorías Especializadas (presenciales o virtuales): Colectivas: 5, Individuales: 10
- Realización de Actividades Académicas Dirigidas: Con presencia del Profesor: 6, Sin presencia del Profesor: 10
- Otro Trabajo Personal Autónomo: Horas de Estudio: 10, Preparación de Trabajo Personal: 8
- Realización de Exámenes: Examen escrito: 1, Exámenes orales (control del Trabajo Personal): 1

Evaluación y calificación:
- Asistencia y participación en clase (%): 20
- Informe de prácticas (%): 20
- Trabajo Individual (%): 30
- Examen (%): 30